常规染色精液样本的制备
用洁净刻度量杯手淫或体外排精方法，必须禁欲3～5d，取全部精液置入量杯中，37℃水浴完全液化后，将精液以玻璃吸管（约50μl）均匀涂布于载玻片上，风干，以甲醛-钙固定液固定3～5min，自然干燥。按染色程序进行操作，置显微镜下计数正常精子百分率、畸形精子百分率、每类畸形精子的百分率。
常规透射电镜精液样本的制备
用洁净刻度量杯（不超过10ml容积），手淫法收集禁欲3～5d的全部精液标本，置37℃水浴锅中，待其完全液化，以玻璃吸管将精液移至离心管中，2000～2500r/min离心3～5min；弃上清液，补充同体积精子营养液（如3.5ml精液，经离心后，弃上清液2.5ml，加精子营养液2.5ml），2000～2500r/min离心3～5min，吸入沉淀的精子团块（像棉花团一样），在盛有新鲜固定液的固定瓶固定（固定液的体积必须大于精液团块的25～50倍）静置，室温（18～22℃）或4℃冰箱过夜。固定好的标本以无齿眼科镊取出，最好放入盛有0.1mol/L TBS缓冲液（PH7.2～7.4）中清洗3次，每次2～3min，1%四氧化锇中固定2h，上升梯度乙醇脱水（其中在100%乙醇中脱水的时间为20～30min，2次），100%丙酮→环氧丙烷（2次，每次15min）→环氧丙烷：包埋剂=1∶1 （1～2小时）→包埋剂（几小时）→包埋。
普通透射电镜标本的固定剂一定要考虑实验的目的和以后的用途，一般以3%多聚甲醛或0.5%戊二醛较好，戊二醛的渗透能力强，但膜性结构保存较差，多聚甲醛的渗透力不如戊二醛，但对膜性结构有很好的保存作用。
包埋剂，常用有两种主料，一种是Epon812，一种是环氧树脂618。前者是一种进口的环氧树脂，它的黏度较低，而国产环氧树脂618为一种淡黄色或淡琥珀色的黏稠性液体，黏度较大，我国长江以南还是以环氧树脂618为好，长江以北以Epon812为好。
普通扫描电镜标本的制备
用洁净的玻璃刻度量杯（容积在10ml）采取禁欲3～5d的全部精液标本，以玻璃吸管吸取精液1ml左右，滴在干净的支持物上，5%苏打水清洗，2.5%戊二醛+1%四氧化锇固定（多用快速冷冻固定），用上升梯度乙醇脱水，标本入醋酸异戊酯中，真空中临界点干燥，离子溅射镀膜，组织导电以常规法进行，脱水和干燥按常规手法进行，必须在一周内扫描电镜观察。
扫描免疫电镜技术标本的制备
- 制成细胞悬液：用10ml内含1mg/ml牛血清白蛋白的清洗缓冲液（WBS-BSA）悬浮精子，250g离心5min，重复清洗1次，加入WBS-BSA至精子浓度为105～106/ml，震摇成单细胞悬液。
- 细胞附着于固体支持物：将 聚-L-赖氨酸（100μg/ml）滴在用乙醇清洗过的盖玻片上，经4℃放置30min。倒去液体，用双蒸水彻底清洗，空气干燥。将精子滴在盖玻片上。
- 前固定：固定前用WBS-BSA洗，每次5min；2%多聚甲醛+0.5%戊二醛固定10～60min；WBSBSA清洗3次，每次5～15min；加含0.1～0.5mol/L氯化铵的PBS，30～60min；
- 免疫标记：加入适当稀释好的一抗，置冰箱内24h，PBS清洗3～4次；加入适当稀释好的胶体金二抗（1∶30～1∶100），淡红色为适宜稀释液，室温10～60min；双蒸水清洗3次，每次3min；5%醋酸双氧铀5min；双蒸水清洗；柠檬酸铅5min；双蒸水清洗；
- 扫描电镜观察。
