答：①标本中的含有抗酸颗粒：如食物颗粒、沉淀物、其他微生物等；②使用污染的木签；③玻片划痕、染色液沉渣、蜡质等干扰；④环境腐生抗酸菌可经水、空气、灰尘进入涂片；⑤脱色不佳；⑥
16答：①使用经过严格处理的或新的载玻片涂片；②使用未经污染，无霉变的新竹签挑取标本，一个标本一根竹签；③染液使用前经过过滤；④染色时各玻片间保持一定距离，严禁重叠；⑤不推荐使用染
17答：①涂片太薄/太厚导致染色不足或脱色过度；或者固定涂膜时加热时间过长导致菌体成分焦化分解；②染色技术不娴熟、使用经典Ziehl-Neelsen染料染色时忘记加热、初染色时间太短、
18答：①确认标本是痰而非唾液；②确认每份标本至少有3ml；③选择脓样、干酪样、黏液分泌物涂抹制备玻片；④制备玻片时标本涂抹均匀，不要太厚或太薄；⑤使用高质量染料、严格按照配方配
19答：优点：①可直接发现病原菌，具有重要的临床诊断价值；通过涂片的半定量报告，动态监控排菌情况，作为考核和评价疗效的重要指标；②可发现和确定传染源途径，具有重要的流行病学意义；③操
20答：①痰标本中正常菌群多，若不去除普通细菌生长速度远快于结核分枝杆菌，可能会覆盖结核分枝杆菌的生长，影响目标菌的分离。由于分枝杆菌与其他细菌相比，对去污染试剂有较强的抵抗
21答：最常见的是采用消化剂和去污剂相混合的方法来处理标本。目前最常用的消化-去污的方法是N-乙酰-L-半胱氨酸-氢氧化钠法（NALC-2% NAOH法）。具体操作如下： 将10ml待检痰标本放入
22答：①注意NAOH浓度，当浓度超过4%时，可以杀灭大部分结核菌。②首先确保标本被完全消化，因而在消化一些比较黏稠的痰标本时，可以增加NALC的浓度。③对污染较重的标本，可选用别的消化
23答：需要进行细胞学筛查。尽管痰液结核菌培养前会做去污染处理，上呼吸道正常菌群对结核菌培养无干扰。但是，唾液标本中的大部分都不是来自肺部，分枝杆菌含量低，培养灵敏度低，不适合
24答：对无痰患者，以及反复痰检均为阴性而临床症状高度怀疑为肺结核的局灶性结核病患者，推荐进行介入性标本采集技术。支气管肺泡灌洗（BAL）、支气管冲洗、横穿支气管活检标本和支气
25答：免疫力低下的患者，特别是艾滋病患者易感染分枝杆菌，播散性感染大多数是由鸟分枝杆菌复合体（包括鸟分枝杆菌-胞内分枝杆菌）引起，所以这类患者需做血液分枝杆菌培养。由于分枝杆
26答：分枝杆菌血培养的方法推荐使用分离器裂解离心系统（Waboratories，Cranbury，N.J.）或者是BACTEC 12B/13A血培养瓶。裂解离心系统的Isolator分离管含有皂素，可溶解细胞释放出细胞内
27答：如果使用BACTEC系统，建议参照普通血培养方法进行床旁接种。如果是采用溶解离心系统，可直接将血液注入Isolator管中。如果使用真空采血管转运标本，抗凝剂可选用SPS（sodium poly
28答：无菌部位采集的无污染的组织标本或体液标本无需进行消化去污染处理。只有在怀疑标本有污染时才进行去污染处理。如果无法确定或不能排除标本污染，则需按照污染标本进行前处
29答：标本采集后应尽快滴加10% Na2CO3，并用pH试纸检测直到pH呈中性，再根据标本性状选择性处理：①黏液样：每20～50ml灌洗液加入50～100mg胱氨酸粉末；混匀方法参照痰标本；3000r/min离心30分
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