近几十年来，男性精液的质量下降，精液量和正常精子数目减少，而泌尿生殖系统疾病，如尿道下裂和隐睾等的发病率上升，睾丸肿瘤在一些地区的发病率增加。因而精液常规检查项目的正常参考值需要重新制定。首次就诊的患者应作两次精液检查，中间间隔7～9天。如果两次检查的结果相差悬殊，则应作第3次检查。精液采集需包括射精过程的全部精液，有部分遗洒或收集不完全的标本不能进行分析。留取的标本最好立即送检。如果在家中留取标本，应在1小时内送检，途中保持温度在20～40℃。如果检查直线运动精子少于25%，那么下次标本应在实验室留取。
精液收集与保存是确保检测质量的关键
盛接精液的容器应是清洁的广口玻璃或塑料瓶，如用塑料瓶，应预先检查对精子有无毒性，容器的温度不宜过低，以免发生精子冷休克反应。不能用普通的避孕套收集精液，因为避孕套对精子的活力有影响；也不能用中断性交的方法留取精液。性交中断时，往往已射出精液的开始部分，不能完整收集全部精液。同时阴道内的酸性分泌物、脱落细胞和细菌会影响分析结果。如果需要做精液细菌学检查，标本的采集应遵循无菌原则，受试者预先排空膀胱，清洁双手和阴茎，盛接精液的容器应事先灭菌消毒。
精液检查应确保可重复性和项目齐全
一般项目
精液的一般检查应包括外观、容量、黏稠度和pH值。正常精液为灰白色混浊物，含有血液时呈棕色。射出体外后5分钟内凝固，室温下在60分钟内自行液化。一份收集完整的精液标本容量为2～6ml。当正常已液化的精液从21G（内直径0.8mm）注射针头挤出或从垂直放置的5ml吸管内依重力自然滴落时，正常精液为细滴，不连续成线。过于黏稠（可能为黏液含量过多）的精液则延续为超过2cm长的液线。也可用毛细玻璃管法测量黏稠度。将1滴已液化的精液涂布在pH试纸上，可测出精液的pH。正常精液的pH为7.2～7.8。pH7.8以上提示生殖道感染；pH7.0以下时，可能存在输精管、精囊或附睾发育不全和无精子。
精子活力
主要包括活动率和直线运动率与活精子密度。将已液化和混匀的精液从21G针头滴出1滴（10～15μl）于清洁载玻片上，覆以20mm×20mm或24mm×24mm盖玻片，在18～24℃室温下放大400～600倍观察，可看到4类精子运动：①迅速直线前进运动；②缓慢直线或非直线前进运动；③无前进运动；④不动。连续观察100个精子，计算出①和②类精子的百分率。最好用第2滴精液重复检查后再发报告。前进运动（包括①和②类）精子占50%或以上，且迅速直线前进运动精子占25%或以上者可认为正常。
将50μl混匀的精液按1∶20比例加入稀释液，滴于覆以盖玻片的血细胞计数板上，在湿润的小盒内放置5分钟，放大200～400倍观察，计数形态完整的有尾精子及每毫升的精子数。正常值为每毫升含20×106个精子或以上，总计数为40×106或以上。精子的存活率是指活精子所占精子计数的比例。通常用伊红或伊红-苯胺黑染色法识别死精子，其原理是死精子的胞膜有破损，染料可以通过破损口进入细胞内使精子染色。在显微镜下计数100个精子，算出没有染色的活精子百分率。正常人活精子应占50%以上。
精子形态分析
正常形态精子比率应占50%以上。精子形态学分析以精子涂片染色为基础，方法有改良的Papanicolaou染色（巴氏染色）、Giemsa染色、Bryan-Leishman染色、Shorr染色或Simple快速染色法。改良巴氏染色可以清晰地显示精子的头顶体区、顶体后区、中段和尾部，分辨出生精细胞和其他细胞，而且适合于各种黏稠度的精液标本。该方法在国际上普遍采用。用1滴（10～15μl）精液制成薄推片，用改良巴氏染色，在油镜下观察精子形态，计数100～200个精子，算出正常精子百分率。
正常精子的头部为卵圆形，长与宽的比值为1∶5～1∶75，顶体占头部的40%～70%，没有颈段、中段或尾段缺陷。以下各类精子为形态异常精子：①头部缺陷：大头、小头、锥形头、空泡头和双头；②颈段和中段缺陷：膨胀、卷曲和形态不规则等；③尾部缺陷：断尾、多尾和卷尾等；④细胞质微滴：大于正常头部的1/3者。正常形态精子占50%以上为正常。
非精子细胞成分和精液培养
是诊断生殖道感染的重要方法。除精子外，精液还含有尿道上皮细胞、未成熟的生精上皮细胞和白细胞等。这些细胞统称为圆细胞，对圆细胞特别是白细胞进行计数有重要意义。正常精液圆细胞数应低于5×106/ml，白细胞总计数在1×106/ml以下。白细胞数过多提示泌尿生殖道炎症。生殖道感染可影响精液量、精子密度和活力。疑有生殖道感染时，应进一步做精液培养。受试者先排空膀胱，用肥皂液清洁阴茎和双手，用无菌容器盛接精液，精浆分别作需氧和厌氧培养。
